INTRODUCCIÓN
Uno
de los aspectos más importantes de los organismos vivientes es su capacidad
para crecer y desarrollarse. La síntesis continua de macromoléculas a partir de
iones y moléculas pequeñas no sólo conducen a la formación de células más
grandes, sino también más complejas. Más aún, no todas las células crecen y se
desarrollan de igual forma, lo que resulta en una planta madura compuesta por
numerosos tipos de células.
Desde que germina la semilla, a medida que
pasa el tiempo la planta va creciendo. Sus células se dividen y multiplican y
luego se alargan; el efecto, por supuesto, es que la planta aumenta en tamaño y
peso. Sin embargo, el crecimiento no es uniforme en toda la planta. Se
encuentra localizado en las zonas meristemáticas, las que producen células que
formarán nuevos tejidos y órganos. Estas zonas se encuentran ubicadas en los
ápices tanto del tallo como de la raíz, en las axilas de las hojas, en la base
de las hojas de gramíneas, y en los tallos, lo que les permite crecer en
grosor.
Se define crecimiento como un aumento
irreversible y permanente de volumen de una célula, tejido, órgano o individuo,
generalmente acompañado de un aumento de masa. No basta que haya solamente
división celular. Algunos parámetros normalmente utilizados para la
cuantificación del crecimiento son: altura, peso seco y fresco, área y longitud
foliar, producción de macollos en gramíneas.
El crecimiento de las plantas en los
suelos agrícolas está influenciado por una multitud de factores bióticos y
abióticos. Mientras que los productores utilizan de manera rutinaria métodos
físicos para manejar el ambiente del suelo y el rendimiento de los cultivos, la
aplicación de productos microbianos para este fin es menos común.
En consecuencia, la rizosfera apoya
activamente las poblaciones microbianas y de gran capacidad, ya sea para
ejercer un beneficio, así como también para perjudiciales efectos neutrales
sobre el crecimiento de las plantas. Estos microorganismos beneficiosos pueden
ser un componente importante de las prácticas de gestión para alcanzar el mayor
rendimiento posible del cultivo y su potencial genético innato.
En las condiciones medioambientales
adecuadas las bacterias fijadoras de nitrógeno producen enzimas que toman este
elemento en su forma gaseosa de la
Los equipos automáticos actualmente se
encuentran atmósfera, y con los azúcares que obtienen de la planta, lo fijan
dentro de la biomasa bacteriana (Garland, 1996)
Se diferencian dos grandes divisiones de
bacterias fijadoras de nitrógeno: Las primeras, tales como el Rhizobium, tienen
presencia en las leguminosas. Estas bacterias forman nódulos en las raíces de
las plantas que son fáciles de contar. Las segundas ocupan los espacios entre
las células de las raíces de la planta y no alteran la arquitectura de la raíz
en absoluto.
Las Bacterias Promotoras del Crecimiento
Vegetal (PGPR) comenzaron a ser aisladas, clasificadas y estudiadas en fines
del siglo XIX. Durante el siglo XX se profundizaron los conocimientos sobre las
características morfológicas, bioquímicas, fisiológicas y
genéticas de cada uno de estos grupos
bacterianos, se ha reconocido la importancia de las poblaciones microbianas de
la rizosfera en mantenimiento de la salud de las raíces, la absorción de
nutrientes y la tolerancia del estrés ambiental. Los microorganismos
descubiertos y estudiados son numerosos y quedan muchos por aislar e
investigar. No obstante, ello, hoy se dispone de grupos bacterianos que son
capaces de proporcionar impactos productivos interesantes en cultivos. Uno de
éstos es un pequeño grupo de cepas denominadas Pseudomonas fluorecens
(FYO.COM, 2009) (Cano, 2011)
La posibilidad de manipular las
poblaciones microbianas de la rizosfera de cultivos mediante la inoculación de
bacterias beneficiosas para aumentar el crecimiento de las plantas constituye
una promesa considerable en los estudios de laboratorio e invernadero, pero las
respuestas han sido variables en el campo. Los beneficios ambientales
potenciales de este enfoque, dan lugar a una reducción en el uso de productos
químicos agrícolas (Benizri, Baudoin, & Guckert, 2001) (Coyne, 2000).
MATERIAL
Y MÉTODOS
La investigación se llevó a cabo en los
meses de abril a mayo en la finca experimental “La María” de la Universidad
Técnica Estatal de Quevedo, ubicada en el Km. 7 de la Vía Quevedo – El Empalme,
Cantón Mocache, Provincia de Los Ríos. Se encuentra entre las coordenadas
geográficas de 01º 06’ de latitud Sur y 79º 29’ de longitud Oeste, una altura
de 73 m sobre el nivel del mar. La Finca “La María” presentó las siguientes
condiciones meteorológicas: Temperatura Promedio 25.18 ºC, Humedad Relativa
87.66%, Heliofanía 64.33 horas/luz/mes,
Precipitación 198.80 mm/mensual. Zona
Ecológica Bosque Tropical húmedo, Topografía ligeramente ondulada (INAMHI,
2010).
Las condiciones del suelo son: Clase
Textural Franca, pH 5.82, Conductividad Eléctrica 0.14 ds/m, Materia Orgánica
4.39% NH 30.70 ppm, Fósforo 20.38 ppm, azufre 13.48 ppm, Potasio 0.90 meq/100 g
Calcio 15 meq/100 g Magnesio 1.70 meq/100 g, Cobre 13.00 ppm, Boro 0.27 ppm,
Hierro 311.0 ppm, Zinc 18.30 ppm, Manganeso 30.00 ppm (AGROLAB, 2014)
Se emplearon cuatro tratamientos de la
combinación de dos gramíneas Saboya
(Megathyrsus maximus) y Brachiaria
decumbens (Brachiaria) con las leguminosas
Kudzú (Pueraria phaseoloides) y Clitoria
(Clitoria ternatea) con cinco repeticiones y tres unidades experimentales, en
un Diseño Completamente al Azar (DCA), para las medias de los tratamientos se
aplicó la prueba de rangos múltiples de Tukey al 95% de probabilidad, se usó el
paquete estadístico INFOSTAT (Di Rienzo, y otros, 2012), a los 60 días edad del
cultivo se tomaron muestras para determinar el crecimiento vegetal, e
identificar los microorganismos, composición química y comportamiento
agronómico.
RESULTADOS
Y DISCUSIÓN
La mayor longitud de raíz se presenta en
el pasto Saboya con 57.00 cm y la menor longitud en B. decumbens con 36.33 cm
presentándose diferencia estadística. Para las variables peso de raíz y biomasa
forrajera los mayores valores se reportan en la B. decumbens con 51.70 y 43.18
g respectivamente y los menores valores en pasto Saboya con 48.31 y 38.82 g
representados en el Tabla 1.
|
Pasto
|
Long raíz (cm)
|
Peso raíz (g)
|
B. Forrajera(g)
|
|
Saboya
|
57.00
a
|
48.31
a
|
38.82
a
|
|
B
decumbens
|
36.33
b
|
51.70
a
|
43.18
a
|
|
CV(%)
|
4598
|
75.13
|
89.49
|
Tabla 1. Longuitud de raíz
(cm),Peso de raíz (g) y biomasa forajerra (g) de las graminias de interes
ganadero.
La leguminosa kudzu presenta los valores
más altos en las variables longitud de raíz con 47.92 cm, biomasa forrajera con
25.67 g y número de nódulos con 25.08 presentando diferencia estadística para
esta última variable. La leguminosa Clitoria ternatea presenta el mayor peso de
raíz con 10.08 g y el menor valor en la leguminosa kudzu con 9.00 g, así como
se indica en el Tabla2
|
Nódulos
|
|
Leguminosas
|
Long raíz
(cm)
|
Peso raíz (g)
|
B.
Forrajera(g)
|
N°.
|
|
Kudzú
|
47.92 a
|
9.00 a
|
25.67 a
|
25.08 a
|
|
Clitoria
|
45.71 a
|
10.08 a
|
18.80 a
|
6.42 b
|
|
CV (%)
|
22.05
|
41.96
|
56.22
|
77.48
|
Tabla 2. Longitud de raíz (cm), Peso de raíz (g) y Biomasa forrajera (g) y
número de nódulos de las leguminosas de interés ganadero.
Al evaluar las diversas muestras de las
rizosferas de cada una de las asociaciones para identificar la presencia de
azotobacter se pudo observar que en el suelo donde fueron sembradas la
asociación de pasto saboya más leguminosas kudzu y clitoria existió la
presencia de Azotobacter vinelandii y en la asociación de Brachiaria decumbens
con kudzu y clitoría se registró la presencia de Azotobacter beijerinckii sin
reportarse
Azotobacter chroococcum y paspali, lo que
difiere, que el Azotobacter no prolifera en suelos ácidos sin embargo existe
presencia en el suelo de la Finca La María el cual es mediana a ligeramente
ácido 5.82 -6.02, (Coyne, 2000) tal como se muestra en el Tabla 3.
|
Presencia de Axotobacter
|
|
Asociación
|
A.
|
A.
|
A.
|
A.
|
|
|
chroococum
|
Vinelandii
|
paspali
|
beijerinckii
|
|
Saboya + Kudzú
|
-
|
+
|
-
|
-
|
|
Saboya + Clitoria
|
-
|
+
|
-
|
-
|
|
BV decumbens + Kudzú
|
-
|
-
|
-
|
+
|
|
BV decumbens + Clitoria
|
-
|
-
|
-
|
+
|
Tabla 3. Presencia de Azotobacter en la rizosfera de las asociaciones de
gramíneas y leguminosas de interés ganadero.
En los aerobios totales (bacterias) la
asociación Saboya más kudzu registró el mayor valor con 3.17 x 107 y en la
asociación de B. decumbens más kudzu con 6.84 x 107
Unidades Formadoras de Colonia (UFC), el
menor valor se registró en la asociación saboya más clitoria con 9.50 x 106 UFC
se presentó diferencias estadísticas entre las diluciones valores superiores a
los que se obtienen en B. decumbens más kudzu 7,4 x 104 y 1,5 x 105 a los 80 y
140 días y en la asociación saboya más kudzu 7,1 x 104 y 2,5 x 106 UFC en las
edades antes mencionadas. (Gaibor & Alvarez, 2011) Figura 1 y 2
Figura 1. Unidades
Formadoras de Colonias (UFC) total en Aerobios totales (bacterias) en la
rizosfera de las asociaciones de gramíneas y leguminosas de interés ganadero
Figura 2. Unidades Formadoras de Colonias (UFC) total en
Aerobios totales (bacterias) en la rizosfera de las asociaciones de gramíneas y
leguminosas de interés ganadero
Al realizar el conteo de las Unidades
Formadoras de Colonia (UFC) en las muestras de hongos y levaduras se pudo
apreciar que el mayor número se reporta en la asociación saboya más kudzu con
3.57 x 106
UFC y el menor valor en la asociación
saboya más clitoria con 7.68 x 105 UFC, en la asociación B decumbens más kudzu
reporta el valor más alto con 1.07 x 106 y el menor valor en B decumbens más
clitoria con 9.44 x 105
valores superiores que se presentan en
saboya más kudzu a los 80 y 140 días valores de 1,8 x 104 y 1,5 x 104 UFC respectivamente
Bacterias UFC Asociaciones
en B decumbens más kudzu presentan valores
de 1,4 x 104 a los 80 días y 1,9 x 104 a los 140 días; es necesario mencionar
que ambas investigaciones se han realizado en la Finca La María utilizando como
sustrato el suelo de la mencionada Finca, además ambos ensayos han sido
llevados en fundas plásticas. (Gaibor & Alvarez, 2011)
Figura 3 y 4
Figura 3. Unidades Formadoras de Colonias (UFC) total en Hongos
y Levaduras en la rizosfera de las asociaciones de gramíneas y
leguminosas de interés ganadero.
Figura 4. Unidades Formadoras de Colonias (UFC) por diluciones en
Hongos y Levaduras en la rizosfera de las asociaciones de gramíneas y
leguminosas de interés ganadero
El mayor nivel de proteína en las
asociaciones de pastos y leguminosas se presenta en saboya más kudzu con 18.20%
y el menor nivel de proteína en la asociación B.
decumbens más clitoria con 15.24%. valor
superior al estudiado en saboya y kudzu de forma individual y similar al valor
de proteína de 16,9% para la kudzu (Rolando, Anzules, De la Torres, &
Farfan, 1989) (Castro, 1996).
Los mayores valores de fibra se reportan
en las asociaciones B. decumbens más kudzú con 39.70% y saboya más clitoria con
39.00%. Como se muestran en el Tabla 4.
|
Saboya B. decumbens
|
|
Parámetros
|
|
|
Kudzú
|
Clitoria
|
Kudzú
|
Clitoria
|
|
Humedad (%)
|
54.00
|
73.90
|
74.95
|
59.86
|
|
Materia seca
(%)
|
46.00
|
26.10
|
25.05
|
40.14
|
|
Proteína (%)
|
18.20
|
17.37
|
17.29
|
15.24
|
|
Ext Etéreo
(%)
|
4.00
|
8.70
|
2.62
|
9.60
|
|
Ceniza (%)
|
13.40
|
11.00
|
14.71
|
7.30
|
|
Fibra (%)
|
34.00
|
39.00
|
39.70
|
30.90
|
|
E.LN.N Otros
(%)
|
43.00
|
31.93
|
46.72
|
44.08
|
Tabla 4. Composición bromatológica de las asociaciones de gramíneas y
leguminosas de interés ganadero.
Al estudiar la relación entre la parte
microbiológica y la composición nutricional podemos observar que 6.66% de las
Unidades Formadoras de Colonias de Bacterias están relacionadas con el nivel de
proteína y 37.32 de las Unidades Formadoras de Colonias de Hongos tienen
relación con el nivel de proteína de las asociaciones de gramíneas y
leguminosas Figura 5 y 6.
Figura 5. Relación microbiológica con el nivel de proteína en
bacterias (UFC) de las asociaciones de gramíneas y leguminosas de interés
ganadero.
Figura 6. Relación microbiológica con el nivel de proteína en hongos (UFC) de
las asociaciones de gramíneas y leguminosas de interés ganadero.
CONCLUSIONES
Se detectó la presencia de Azotobacter
vinelandii en la asociación del pasto saboya más kudzu y clitoria, Azotobacter
beijerinckii en la asociación de Brachiaria decumbens más kudzu y clitoria.
La mayor presencia de hongos y levaduras
se presentó en la asociación de saboya más kudzu con 3.57 x 106 UFC y en
bacterias B decumbens más kudzu con 6.84 x 107.
La asociación de pasto saboya más kudzu presentó
el mayor nivel de proteína con 18.20%. La relación entre el nivel de proteína y
las bacterias fue del 6.66%, para hongos y levaduras fue 37.32%.
REFERENCIAS
BIBLIOGRÁFICAS
AGROLAB. (2014). Informe de laboratorio.
Santo Domingo de los Tsáchilas.
Benizri, E., Baudoin, E., & Guckert, A. (2001). Colonizacion en las raices de crecimiento de las plantas inoculadas
rizobacterias promotoras. Biocontrol Ciencia. Tecnologia.
Cano, M. (2011). Interacción de microorganismos
benéficos en plantas: Micorrizas, Trichoderma spp. y Pseudomonas spp. una
revisión. Revista U.D.CA. ACTUALIDAD & Divulgación cientifica, Vol 14(No.
2). doi: https://doi.org/10.31910/rudca.v21.n2.2018
Castro, R. (1996). Patron de rebrote de Kudzu
Pueraria phaseliodes Roxb a diferentes severidades y niveles de
sustancias de reservas. Tesis profesional. Universidad Autonoma Chapingo,
Estado de Mexico.
.Coyne, M. (2000). El suelo como habitat
microbiano. Microbiología del suelo un enfoque exploratorio. España: Editorial
Paraninfo.
Di Rienzo, J., Casanoves, F., Balzarini, M., González,
L., Tablada, M., & Robledo, C. (2012). InfoStat versión:www.infostat.com.ar.
(infostat.com.ar) Gar
Obtenido de
www.infostat.com.ar:
http://www.infostat.com.ar
FYO.COM. (15 de Enero de 2009).
FYO.COM:www.fyo.com. Recuperado el 2 de diciembre de 2010, de www.fyo.com:
http://www.fyo.com/granos/ampliar.asp?IdNoticia=92416&IdAutor=97220&idtipoi
nformacion=22
Gaibor, S., & Alvarez, G.
(2011). Comportamiento agronómico y valoración nutricional de
la asociación de kudzú tropical (Pueraria phaeloides) con pasto saboya (Panicum
maximun) y pasto Brachiaria decumbens (Brachiaria Spp).
Universidad Tecnica Estatal de Quevedo
Unidad de Estudios a Distancia, Carrera Ingenieria Agropecuaria, Quevedo -
Ecuador.
land, J. (1996). Los patrones de utilizacion de C
fuente potencial de las comunidades rizosfera. Biol, suelo. Biochem.
INAMHI. (2010). Anuario meteorológico Estacion
Experimental Tropical Pochilingue. Obtenido de http://www.inamhi.gob.ec
Rolando, C., Anzules, A., De la Torres, R., &
Farfan, C. (1989). Manual de pastos tropicales "
Instituto Nacional de Investigacion Agropecuaria (INIAP).