Artículo científico: Trazabilidad microbiológica de enterobacterias en sitios poco monitoreados y contaminados
con arsénico proveniente de fuentes naturales en la parroquia de Toacaso
Publicación Semestral. Vol. 1, No. 1, enero-junio 2022, Ecuador (p. 35-49)
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Publicación Semestral. Vol. 1, No. 1, enero-junio 2022, Ecuador (p. 35-49). Edición continua
TRAZABILIDAD MICROBIOLÓGICA DE ENTEROBACTERIAS EN SITIOS
POCO MONITOREADOS Y CONTAMINADOS CON ARSÉNICO PROVENIENTE
DE FUENTES NATURALES EN LA PARROQUIA DE TOACASO
Dennys Villegas Pazmiño
1
*, Tatiana Rueda Santo1, Jenny Changoluisa Tandalla1
1 Universidad Técnica de Cotopaxi, Facultad de CAREN, Ingeniería Ambiental, Latacunga, Cotopaxi, Ecuador.
*Dirección para correspondencia: denpa15v@gmail.com
Fecha de Recepción: 08-10-2021 Fecha de Aceptación: 07-12-2021 Fecha de Publicación: 31-01-2022
Resumen
Esta investigación tiene como objetivo establecer la trazabilidad microbiológica de enterobacterias en sitios poco
monitoreados y contaminados con arsénico proveniente de fuentes naturales en la parroquia de Toacaso, quebrada
Talahuachana. El muestreo de agua para consumo humano y riego se realizó bajo la Norma Técnica Ecuatoriana
(NTE) INEN 2169, INEN 2176 e ISO/IEC 17025:2006 y para microorganismos la NTE INEN 2169:2013. El
crecimiento de bacterias fue en Agar MacConkey y Agar Nutritivo y por el método de siembra por extensión y
estrías respectivamente. Los resultados evidencian que el pH del agua de la quebrada Talahuachana es neutro
(6.97-7.1), con temperatura de 6 a 7 ºC, baja concentración de sulfatos (64.75-47.32 mg/L) y coliformes fecales
(2 NMP/100mL) lo que evidencia el cumplimiento de estos parámetros para el Acuerdo Ministerial 097 – A. Sin
embargo, el arsénico supera lo establecido para uso humano y riego. Por otro lado, los cultivos aislados
corresponden a Bacilos Gram negativos fermentadores de lactosa (2 a 3 μm), posiblemente pertenecientes a una
enterobacteria común, género Escherichia. El crecimiento de enterobacterias y la presencia de arsénico, propone
que los microorganismos aislados son tolerantes al arsénico.
Palabras claves: Arsénico, Concentraciones, Enterobacterias, Microorganismos, Trazabilidad microbiana.
IDs Orcid:
Dennys Villegas Pazmiño: http://orcid.org/0000-0003-1709-6910
Tatiana Rueda Santo: http://orcid.org/ 0000-0002-4002-2242
Jenny Alexandra Changoluisa: https://orcid.org/0000-0003-2809-6860
Art
ícu
lo
de
Inv
esti
Villegas, P., Ruedas, T., Changoluisa. J.
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MICROBIOLOGICAL TRACEABILITY OF ENTEROBACTERIA IN SITES
POORLY MONITORED AND CONTAMINATED WITH ARSENIC FROM
NATURAL SOURCES IN THE PARISH OF TOACASO
Abstract
This research aims to establish the microbiological traceability of enterobacteria in sites poorly monitored and
contaminated with arsenic from natural sources in the parish of Toacaso, Talahuachana ravine. The sampling of
water for human consumption and irrigation was carried out under the Ecuadorian Technical Standard (NTE)
INEN 2169, INEN 2176 and ISO/IEC 17025:2006 and for microorganisms the NTE INEN 2169:2013. The growth
of bacteria was in MacConkey Agar and Nutritive Agar and by the method of sowing by extension and stretch
marks respectively. The results show that the pH of the water of the Talahuachana stream is neutral (6.97-7.1),
with a temperature of 6 to 7 ºC, low concentration of sulfates (64.75-47.32 mg / L) and fecal coliforms (2 NMP /
100mL) which shows compliance with these parameters for Ministerial Agreement 097 – A. However, arsenic
exceeds what is established for human use and irrigation. On the other hand, the isolated cultures correspond to
Gram negative lactose fermenting bacilli (2 to 3 μm), possibly belonging to a common enterobacterium, genus
Escherichia. The growth of enterobacteria and the presence of arsenic, proposes that the isolated microorganisms
are tolerant to arsenic.
Keywords: Arsenic, Concentration, Enterobacteriaceae, Microorganisms, Microbial traceability.
Revista Recursos Naturales Producción y Sostenibilidad
Artículo científico: Trazabilidad microbiológica de enterobacterias en sitios poco monitoreados y contaminados
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1. INTRODUCCIÓN
La contaminación por arsénico en el agua se ha convertido en uno de los mayores problemas
ambientales y representa una grave amenaza para la salud de los ecosistemas y los seres
humanos, lo que genera una preocupación generalizada (Yousif et al., 2016; Chaolei et al.,
2022). El arsénico presente en el agua de riego provoca su acumulación en el suelo, esto a su
vez, en bioacumulación en cultivos (FAO & OMS, 2017). Los cultivos con mayor exposición
a esta condición son las hortalizas, debido a su contacto directo con el agua de riego (Ortega-
García et al., 2010).
El Arsénico se encuentra presente en el ecosistema de forma natural en aguas subterráneas y
superficiales zonas volcánicas (Campaña & Chicaiza, 2020). En estas áreas se puede encontrar
altos niveles de arsénico debido a la erosión de los depósitos minerales que contienen arsénico.
La contaminación y distribución en zonas bajas se debe a condiciones antropogénicos y
procesos naturales, y su problemática radica en su fácil movilidad en el ambiente, sobre todo
en el agua (Fonseca Largo et al., 2020; Rangel Montoya et al., 2015).
La mayor parte del Ecuador se caracteriza por el consumo de agua proveniente de fuentes
naturales, lo que ocurre en la parroquia de Toacaso, cantón Latacunga, provincia de Cotopaxi,
Donde el agua que utilizan los pobladores para consumo humano y agrícola proviene de la
quebrada Talahuachana que nace de los Illinizas Sur. Dichas aguas se encuentran contaminadas
con arsénico, generando problemas en la salud a los moradores pues el arsénico es considerado
un carcinógeno crónico de clase I, su toxicidad puede causar hipo e hiperpigmentación,
queratosis, cáncer de pulmón, piel e incluso vejiga urinaria, entre otros (Mazunder, 2008). La
Secretaría Nacional del Agua de Ecuador (SENAGUA) reportó concentraciones extremas de
As (hasta 980 μg/L) en el agua potable y de riego en múltiples zonas de Toacaso dentro del
complejo volcánico Ilinizas, en la provincia de Cotopaxi (Tovar, 2020).
Por lo que la Trazabilidad microbiológica de enterobacterias y el análisis de la presencia de
arsénico en el agua de la quebrada Talahuachana de la parroquia de Toacaso a una altura 3600
y 3700 msnm permitirá establecer la situación actual del agua de la quebrada y a su vez se
podrá a futuro implementar técnicas de biorremediación microbiana (Mateos et al., 2017) que
ayuden a mejorar la calidad del recurso hídrico. Utilizando especies de microorganismos que
Villegas, P., Ruedas, T., Changoluisa. J.
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se encuentren dentro del ecosistema acuático de la zona de estudio, con el fin de no alterar el
ecosistema natural.
2. METODOLOGÍA
2.1 Área de estudio
El punto de muestreo se encuentra ubicado en el afluente de la quebrada Talahuachana con una
longitud de 9.98 km, el cual nace desde las faldas del estratovolcán Illiniza Sur perteneciente a
la microcuenca del río Blanco, parroquia Toacaso, cantón Latacunga, provincia de Cotopaxi.
El punto de muestreo se halla en las coordenadas -0.718° de latitud sur y -78.73° de longitud
oeste, entre los 3600 a 3700 msnm. La microcuenca del río blanco cuenta con la presencia de
tres afluentes: quebrada Agua Amarilla, río Blanco y quebrada Talahuachana. Dentro de esta
quebrada se encuentran 11 concesiones para agua con uso para riego y uso doméstico (Figura
1).
Figura 1. Quebrada de Talahuachana, su altitud, punto de muestreo y distribución de las
concesiones
2.2 Muestreo para el análisis de agua de riego y consumo humano
La recolección de las muestras de agua en la quebrada Talahuachana, fue analizada en el
laboratorio LANCAS que está acreditado por el Servicio de Acreditación Ecuatoriano (SAE)
y bajo los requerimientos establecidos en la Norma NTE INEN 2169, NTE INEN 2176 e
ISO/IEC 17025:2006. La muestra llevada al laboratorio fue compuesta, es decir, tomadas en
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un mismo punto, pero en diferentes tiempos. Para cada parámetro de calidad del agua se
procedió a realizar lo siguiente:
- Oxígeno disuelto: Se llenó un recipiente winkler de 300 mL posteriormente se coloca
los preservantes: vial 1 (1 mL de sulfato manganoso), vial 2 (1 mL de álcali yoduro) y
vial 3 (2 mL de ácido sulfúrico concentrado). La determinación del oxígeno disuelto en
el laboratorio fue por el método de volumetría.
- pH y Sulfatos: En el caso de los dos parámetros fue necesario llenar un envase plástico
de 1000 mL para cada parámetro. Para el pH y sulfato se utilizó el método de
electrometría y espectrometría respectivamente.
- Arsénico y Manganeso: Para el análisis de estos parámetros se recolectó una muestra
en el envase plástico de 250 mL, dejando un pequeño espacio en el cuello del envase.
Luego se colocó 5 gotas de ácido nítrico concentrado enviado por el laboratorio.
Posteriormente se invierte el frasco tres veces para homogeneizar la muestra y se rotuló.
Para el análisis se utilizó el método de espectrometría de absorción atómica de llama.
- Coliformes fecales: Para este parámetro fue necesario abrir el frasco plástico
esterilizado de 100 mL, sumergirlo en el agua y llenarlo dejando un espacio de aire y
por último tapar el frasco lo más pronto posible. Este parámetro fue analizado por el
método de análisis microbiológico.
Todas las muestras para los diferentes parámetros se transportaron con hielo hasta el
laboratorio.
2.3 Muestreo de agua para cultivos de microorganismos
Para el cultivo y siembra de microorganismos se realizó el muestreo bajo la Norma Técnica
Ecuatoriana NTE INEN 2169:2013 para agua, calidad de agua, muestreo, manejo y
conservación de muestras. Este muestreo se realizó con un frasco Urintainer esterilizado 90
mL, que se sumergió en el agua y se llenó dejando un espacio de aire. Posteriormente se tapó
y se transportó con hielo la muestra. El cultivo de microorganismo se realizó en el laboratorio
Villegas, P., Ruedas, T., Changoluisa. J.
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de la Carrera de Ambiental de la Facultad de CAREN de la Universidad Técnica de Cotopaxi,
Ecuador.
2.4 Medios de cultivo
Se utilizaron dos tipos de medios de cultivos para determinar el crecimiento de
microorganismos.
Agar MacConkey, debido a que es un medio de cultivo selectivo y diferencial que permite el
crecimiento de enterobacterias, como agente inhibidor de los demás microorganismos, con una
concentración al 5%m/v (Puruncajas, 2013).
Agar Nutritivo se utilizó debido a que permite el crecimiento exponencial de las bacterias que
se van a aislar, ya que este agar tiene los nutrientes adecuados para su desarrollo, con una
concentración 3%m/v (Puruncajas, 2013).
2.5 El método para la siembra
Para el medio de cultivo de agar MacConkey se utilizó la siembra por extensión que es un
método de distribución uniforme de microorganismos sobre la superficie de una placa de agar.
Con la ayuda de un esparcidor estéril, se extiende un pequeño volumen de cultivo microbiano
uniformemente sobre la superficie del agar (Cordova et al., 2015).
En el medio de cultivo de agar Nutritivo se utilizó el método por estrías que es usado para aislar
cepas puras en una placa Petri a partir de un inóculo o muestra con diferentes especies. La
técnica es mediante un asa de siembra previamente esterilizada, rayar la superficie de cultivo
de una placa Petri de forma que en cada pasada sea menor el número de células depositado, las
últimas pasadas deberán depositar un número tan bajo de células que, una vez incubadas, se
formen colonias puras (Olivas, 2011).
La incubación de los medios de cultivos se da a 25 ºC por 72 h, para observar la célula viable
originaria de una colonia visible resultado de sucesivas divisiones celulares (Murillo &
Pullupaxi, 2019).
2.6 Tinción de Gram
En la tinción lo primordial es realizar un frotis de la colonia de microorganismos para lo cual
fue necesario colocar una gota de agua destilada en el portaobjetos. Después con el asa nicrom
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esterilizada se saca una cantidad mínima de la colonia que se encuentra en la caja Petri,
colocando dentro de la gota de agua mientras se realiza movimientos circulares para que la
biomasa se mezcle con el agua (Vizcarrondo & Gamboa, 2001). Después se debe fijar la mezcla
por calor, por lo tanto, es necesario la utilización del mechero, pasar el portaobjetos por encima
de la llama realizando movimientos en zigzag o circulares, levantando constantemente la
muestra evitando que se queme, quedando totalmente seca y por lo tanto fija en el portaobjetos
(Vizcarrondo & Gamboa, 2001).
Cada muestra se tiñó con azul de metileno (1%) por un minuto, luego se lavó con agua destilada
para eliminar el exceso de colorante y se cubrió con lugol (5%), que actúa como mordiente.
Luego de reposar por un minuto y lavar con agua, se decoloró con el alcohol antiséptico por 30
segundos, después se lavó con agua, se tiñó con safranina (1%) por 1 minuto. El exceso de
colorante se elimina con agua destilada, dejando secar las láminas a temperatura ambiente para
observar en el microscopio (Murillo & Pullupaxi, 2019).
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Debido a que está quebrada tiene 11 concesiones de agua: 5 para consumo humano y 6 de riego
y uso agrícola (Figura 1), se procedió a analizar los parámetros con los criterios de calidad de
agua.
3.1 Criterio de calidad de agua para consumo humano y riego
Los resultados de los parámetros de la muestra de agua de la quebrada Talahuachana fueron
comparados con los límites máximos permisibles del acuerdo Ministerial 097-A, para aguas de
consumo humano y uso doméstico (Tabla 1) y calidad de aguas de uso agrícola o de riego
(Tabla 2).
Con bases al análisis obtenido por parte del laboratorio de la muestra de agua de la quebrada
Talahuachana en comparación con el Acuerdo Ministerial 097-A para consumo humano,
podemos evidenciar que en el mes de enero y marzo los parámetros como: pH, sulfatos,
coliformes fecales cumplen con los límites máximos permisibles (LMP) establecidos en la ley.
Sin embargo, el arsénico se encuentra dentro de los LMP durante el mes de enero, pero en
marzo no (Tabla 1). Es decir, existe un incremento de 54 veces.
Villegas, P., Ruedas, T., Changoluisa. J.
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Tabla 1. Criterios de calidad para aguas de consumo humano y uso doméstico en la quebrada
Talahuachana
Parámetros
Unidades
Enero
Marzo
Acuerdo Ministerial
097-A
Temperatura
ºC
6.00
7.00
----
Arsénico
mg/L
0.03
1.79
0.10
Coliformes fecales
NMP/100mL
2.00
2.00
1000
Manganeso
mg/L
0.67
0,51
----
Oxígeno disuelto
mg/L
5.60
6.56
----
pH
----
6.97
7.10
6.00 – 9.00
Sulfatos
mg/L
64.75
47.32
500.00
En la Tabla 2 se observa que el pH, sulfatos, coliformes fecales, oxígeno disuelto se encuentran
dentro de los LMP para aguas de uso agrícola o de riego en los meses de enero y marzo. Pero
el manganeso sobrepasa lo indicado por la ley en los dos meses y el arsénico sólo en marzo.
Tabla 2. Criterios de calidad admisibles para aguas de uso agrícola o de riego en la quebrada
Talahuachana
Parámetros
Unidades
Enero
Marzo
Acuerdo Ministerial
097-A
Temperatura
ºC
6.00
7.00
----
Arsénico
mg/L
0.03
1.79
0.10
Coliformes fecales
NMP/100mL
2.00
2.00
1000
Manganeso
mg/L
0.67
0.51
0.20
Oxígeno disuelto
mg/L
5.60
6.56
3.00
pH
----
6.97
7.10
6.00 – 9.00
Sulfatos
mg/L
64.75
47.32
250.00
El pH para las aguas de la quebrada Talahuachana a una altura de 3623 msnm es pH neutro. El
arsénico puede existir en el agua en varias formas orgánicas e inorgánicas. En este caso
posiblemente es arsénico V, debido a que este tipo de arsénico predomina en ambientes
acuosos, aeróbicos, entre pH neutro (Sugár et al., 2013). Este pH además permite el óptimo
crecimiento de las enterobacterias y otras bacterias Gram positivas o negativas (Aguilera,
2010). En el caso de la temperatura del agua oscila entre 6 a 7 ºC, considerando que se
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encuentra en un clima mesotérmico templado frío. Estas temperaturas bajas retrasan el
crecimiento bacteriano y acumulan las partículas de los diferentes metales aumentando sus
concentraciones en el agua (Caycedo et al., 2021).
La presencia de sulfatos en el agua de la quebrada es baja, esto es bueno porque el sulfato en
altas concentraciones en el agua tiene un efecto laxativo cuando se combina con calcio y
magnesio (Rodriguez et al., 2010). De igual manera los coliformes fecales son bajos, esto
indica la poca presencia de bacterias que causan enfermedades en el agua, o es o indicio de
indicio de que el agua puede estar contaminada con de desechos en descomposición u aguas
negras (Ramos-Ortega et al., 2008). En caso del oxígeno disuelto en los dos meses está sobre
los valores establecidos en el Acuerdo Ministerial 097 – A, estos valores son óptimos para los
microorganismos aerobios que necesitan oxígeno para el desarrollo de los procesos
metabólicos. Lo contrario pasa con las enterobacterias que son bacterias que crecen mejor en
ambientes con escaso oxígeno, pero hay que recalcar que las enterobacterias son anaerobios
facultativos, es decir, pueden vivir en ambientes con oxígeno (Bush, 2021).
La presencia de manganeso en el agua en la quebrada es alta, esto provoca el desarrollo de
ciertas bacterias que forman depósitos insolubles de estas sales, debido a que se convierten por
oxidación, de manganoso en solución al estado mangánico en el precipitado, similar a la del
hierro (Vega et al., 2017), esto podría obturar los emisores de los sistemas de riego en Toacaso.
Asimismo, el arsénico es alto, según la OMS lo considera perjudicial para el ser humano,
cuando se consume agua que tenga una concentración superior a 10 µg L-1 (Montoya et al.,
2015). Por lo tanto, la concentración de arsénico presente en la quebrada supera lo establecido
por la OMS y el Acuerdo Ministerial 097 – A, lo cual es peligroso que sea consumida por el
ser humano y utilizado para la agricultura pues a corto y largo plazo puede causar enfermedades
crónicas como el cáncer. El cambio brusco existente en la concentración de arsénico por la
escorrentía presente en el mes de marzo, posiblemente es porque empieza la época lluviosa por
lo cual el agua se filtra en el suelo arrastrando partículas presentes en el mismo como es el
arsénico, y llevándolo a la red de drenaje que es la quebrada Talahuanchana.
Villegas, P., Ruedas, T., Changoluisa. J.
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3.2 Cultivo de enterobacterias en Agar MacConkey
En el agar MacConkey a una concentración de 5% m/V a las 72 h evidenció la formación de
tres colonias (col-A, col-B y col-C), las mismas que posteriormente fueron aisladas en agar
nutritivo. Para la selección de las colonias bacterianas se consideró la distinción de
características morfológicas relacionadas al borde, elevación, color, textura, formación del halo
y capacidad de fermentación de lactosa.
Figura 2. Formación de tres tipos de colonia en agar MacConkey a una concentración 5%
m/V, cultivo de 72 h
Las tres colonias seleccionadas del agar MacConkey col-A, col-B y col-C fueron aisladas por
el método de estrías en agar nutritivo con el fin de obtener el crecimiento abundante de
microorganismos.
3.3 Cultivo directo del agua al agar nutritivo por el método de extensión
Al cultivar directamente el agua de la quebrada Talahuchana en el agar nutritivo por el método
de extensión, se distingue innumerables colonias de diversos colores (Figura 3), eligiendo así
tres colonias diferentes (col-A2, col-B2 y col-C2), las mismas que presentan características
diferentes tanto en color, forma, tamaño, borde y elevación de su colonia.
En el caso de la col A, presenta un color rojo, con forma circular, borde ondulado y elevación
convexa. Por otra parte, tenemos la col C que presenta un color amarillo intenso, de forma
circular, con borde liso y elevación elevada. Por último, tenemos la col B2 de color pálido,
forma circular, borde ondulado y elevación plana.
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Figura 3. Cultivo directo de agua en agar nutritivo por extensión, concentración 3%m/V,
cultivo de 72 h
3.4 Identificación de bacterias Gram negativo y positivo
En la Figura 4 se visualiza en el microscopio (lente S100X) el medio de cultivo, en las imágenes
4B y 4C se distingue bacterias de color rojizo, en cambio en la imagen 4A existen
microorganismos teñidos de un color rosado. Esto es porque las tres muestras son bacterias de
tipo Gram negativo debido a su respuesta frente a la tinción Gram. Además, en la Figura 4B y
4C se visualiza de mejor manera la forma de las bacterias, las cuales corresponden al tipo bacilo
y según la escala micrométrica dichas bacterias miden aproximadamente entre 2 a 3 μm. Por
otra parte, en la Figura 4A se aprecia con dificultad la forma de las bacterias, pero posiblemente
también podría corresponder a la forma bacilliar con una medida similar.
Figura 4. Tinción Gram de bacterias observadas al microscopio en lente S100X. A. Frotis de
colonia col-A. B Frotis de colonia col-B y C Frotis de colonia col-C posiblemente bacilos
Gram (-)
La Figura 5, en el microscopio (lente S100X) la imagen A2 evidencia la presencia de
microorganismos teñidos de un color rosado Gran negativo, en cambio las imágenes B2 y C2
se distingue bacterias pintadas de color morado. Es decir, las dos últimas muestras son bacterias
Villegas, P., Ruedas, T., Changoluisa. J.
46
de tipo Gram positivo debido a su respuesta frente a la tinción Gram. Además, en la Figura 5,
A2 y B2 se distingue de mejor manera la forma de las bacterias, las cuales corresponden al tipo
bacilo y según la escala micrométrica dichas bacterias miden aproximadamente entre 3 a 4 μm.
Por otra parte, en la figura 5C2, la imagen no es clara, pero posiblemente son estafilococos.
Figura 5. Tinción Gram de bacterias observadas al microscopio en lente S100X. A. Frotis de
colonia col-A. B Frotis de colonia col-B2 y C Frotis de colonia col-C2, posiblemente
estafilococos Gram (+)
3.5 Relación entre presencia de enterobacterias con concentraciones de arsénico
El análisis de tinción Gram determinó que eran bacterias Gram negativas, con una medida
aproximada de 2 a 3 μm (Figura 4), estos tres criterios nos permiten posiblemente definir que
las colonias aisladas pertenecen al género Escherichia. Dicha suposición es probable porque la
cepa Escherichia muestra una mejora significativa en la capacidad de acumulación hacia
especies de Arsénico orgánicas e inorgánicas en el agua con alta selectividad y afinidad, ya que
la célula presenta el potencial de eliminar especies de arsénico orgánico, especialmente el
metilado (Yang et al., 2013).
De la misma manera, el cultivo directo de agua en agar nutritivo (Figura 3), evidenció diversas
bacterias Gram positivo y Gram negativo (figura 5) y probablemente del género Pseudomona.
La bibliografía sugiere que son una especie de bacterias calcificadas, que resiste el arsénico y
lo transforma a través de un proceso de oxidación. Los investigadores aprovecharon estas
propiedades para crear un estanque o biorreactor donde las Pseudomonas sp. quedan
inmovilizadas en un soporte inerte (Leighton, 2018). Este tipo de bacterias son capaces de
tolerar concentraciones altas de arsénico. Por lo tanto, los autores nombrados anteriormente
expresan que las enterobacterias específicamente la Escherichia y Pseudomonas, resiste un
hábitat con concentraciones de arsénico como en el caso de nuestra zona de estudio que
presenta hasta 1,792 mg/L, existiendo una mayor posibilidad que la colonia obtenida en los
resultados sea posiblemente alguna cepa de Escherichia.
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Este tipo de bacterias se podrían utilizar en un futuro para posibles biorremediaciones de aguas
con concentraciones de arsénico, contribuyendo así con el medio ambiente y evitando alterar
el ecosistema de la quebrada Talahuachana.
4. CONCLUSIONES
La concentración de arsénico presente en el agua de La quebrada Talahuachana es muy variable
de enero a marzo. El pH para las aguas de la quebrada Talahuachana es neutro (6.97-7.1), con
temperatura que oscila entre 6 a 7 ºC, correspondiente al clima de la zona. La baja
concentración de sulfatos (64.75-47.32 mg/L) y coliformes fecales (2 NMP/100mL) evidencia
el cumplimiento de estos criterios tanto para uso humano y riego. Sin embargo, el arsénico
supera lo establecido por el Acuerdo Ministerial 097 – A, lo cual es peligroso que sea
consumida por el ser humano y utilizado para la agricultura
La relación entre las enterobacterias y la presencia de arsénico, propone que los
microorganismos aislados son tolerantes al arsénico en el agua de la quebrada, ya que los
cultivos presentaron crecimiento. La caracterización y trazabilidad microbiológica sugiere que
los cultivos aislados corresponden a Bacilos Gram negativos fermentadores de lactosa, de
aproximadamente 2 a 3 μm, por lo cual se podría suponer que las bacterias presentes en estos
cultivos pertenecen al género Escherichia, el cual es ampliamente conocido como una
enterobacteria común y recientemente se ha identificado su potencialidad como posible
biorremediador en tecnologías de remoción de contaminantes en tratamiento de agua residual.
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